製備感受態細胞時,應特別注意哪些環節

2021-03-04 05:23:11 字數 4519 閱讀 3613

1樓:涼了的

1、整個實驗過程均需置於冰上進行。

2、選用對數生長期細胞,od600在0.4~0.5間。

3、所有操作必須做到嚴格無菌,防止雜菌和雜dna的汙染。

4、動作不應太劇烈,減少細胞的機械損傷。

2樓:

保證感受態細胞的活性,所有操作盡量在冰上,暴露在空氣中的時間盡量短。

3樓:馮雨凝

1、整個實驗過程均需置於冰上進行。

2、選用對數生長期細胞,od600不應高於0.5。

感受態細胞製備過程中應注意什麼

4樓:阿魯巴星人

最重要的是控制菌的od值

選對正確的方法

一定要避免表面活性劑的存在和劇烈的**

避免高溫,最好全程低溫

注意避免雜菌汙染

一般就這幾條,注意了,感受態效率應該沒有問題。

感受態細胞的製備時有什麼注意事項

5樓:天寂無痕

1、培養溫度。較低的溫度培養有利於感受態的形成,這樣可以獲得較高的感受態,但太低又不實用,因而產生了 inoue 的高效感受態製備方法,它實際是利用了所有有利於感受態的文獻而得出的一

個非常理想方法。

2、在儲存感受態時,dmso 要比甘油的效果要好,它會使感受態的效率增加。

3、液氮速凍也會使感受態的效率提高,因此推薦用液氮速凍感受態,然後儲存於超低溫冰箱內。

4、凍存的感受態用一次拿一管,不要反覆凍融。化凍之後立即使用,不要冰上放太久。

5、操作時可以輕彈輕甩,盡量避免用移液器吹吸。

6樓:y神級第六人

(1)質粒dna的質量和濃度:

用於轉化的質粒dna應主要是超螺旋態的,轉化率與外源dna的濃度在一定範圍內成正比,但當加入的外源dna的量過多或體積過大時,則會使轉化率下降。一般地,dna溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5%,1ng的cccdna即可使50ul的感受態細胞達到飽和。對於以質粒為載體的重組分子而言,分子量大的轉化效率低,實驗證明,大於30kb的重組質粒將很難進行轉化。

此外,重組dna分子的構型與轉化效率也密切相關,環狀重組質粒的轉化率較分子量相同的線性重組質粒高10~100倍,因此重組dna大都構成環狀雙螺旋分子。

(2)感受態細胞的質量:

所用的cacl2等試劑均需是最高純度的,並用最純淨的水配製,最好分裝儲存於4℃

(3)細胞的生長狀態和密度

最好從-70℃或-20℃甘油儲存的菌種中直接轉接用於製備感受態細胞的菌液。不要用已經過多次轉接,及貯存在4℃的培養菌液。細胞生長密度以每毫公升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳。

即應用對數期或對數生長前期的細菌,可通過測定培養液的od600控制。對tg1菌株,od600為0.5時,細胞密度在5×107個/ml左右。(應注意od600值與細胞數之間的關係隨菌株的不同而不同)。

密度過高或不足均會使轉化率下降。

(二)感受態細胞轉化中的影響:

整個操作過程均應在無菌條件下進行,所用器皿,如離心管,移液槍頭等最好是新的,並經高壓滅菌處理。所有的試劑都要滅菌,且注意防止被其它試劑、dna酶或雜dna所汙染,否則均會影響轉化效率或雜dna的轉入。整個操作均需在冰上進行,不能離開冰浴,否則細胞轉化率將會降低。

在製備感受態細胞的實驗中要注意哪些細節

7樓:du知道君

最重要的是控制菌的od值 選對正確的方法 一定要避免表面活性劑的存在和劇烈的** 避免高溫,最好全程低溫 注意避免雜菌汙染 一般就這幾條,注意了,感受態效率應該沒有問題。

大腸桿菌感受態細胞的製備要注意哪些因素

8樓:歷懷雨行茶

(1)質粒dna的質量和濃度:

用於轉化的質粒dna應主要是超螺旋態的,轉化率與外源dna的濃度在一定範圍內成正比,但當加入的外源dna的量過多或體積過大時,則會使轉化率下降。一般地,dna溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5%,1ng的cccdna即可使50ul的感受態細胞達到飽和。對於以質粒為載體的重組分子而言,分子量大的轉化效率低,實驗證明,大於30kb的重組質粒將很難進行轉化。

此外,重組dna分子的構型與轉化效率也密切相關,環狀重組質粒的轉化率較分子量相同的線性重組質粒高10~100倍,因此重組dna大都構成環狀雙螺旋分子。

(2)感受態細胞的質量:

所用的cacl2等試劑均需是最高純度的,並用最純淨的水配製,最好分裝儲存於4℃

(3)細胞的生長狀態和密度

最好從-70℃或-20℃甘油儲存的菌種中直接轉接用於製備感受態細胞的菌液。不要用已經過多次轉接,及貯存在4℃的培養菌液。細胞生長密度以每毫公升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳。

即應用對數期或對數生長前期的細菌,可通過測定培養液的od600控制。對tg1菌株,od600為0.5時,細胞密度在5×107個/ml左右。(應注意od600值與細胞數之間的關係隨菌株的不同而不同)。

密度過高或不足均會使轉化率下降。

(二)感受態細胞轉化中的影響:

整個操作過程均應在無菌條件下進行,所用器皿,如離心管,移液槍頭等最好是新的,並經高壓滅菌處理。所有的試劑都要滅菌,且注意防止被其它試劑、dna酶或雜dna所汙染,否則均會影響轉化效率或雜dna的轉入。整個操作均需在冰上進行,不能離開冰浴,否則細胞轉化率將會降低。

cacl2法制感受態細胞:最近用此法製備感受態細胞,但是轉化後的效率很低,幾天看看平白機會乙個沒有長。

9樓:匿名使用者

首先要掌握好培養時間,細胞對數生長期的時候再做,一般od600為0.5左右。其次,在製備的時候要注意一定要整個過程都在冰上,保持低溫很重要,特別是離心過程,冷凍離心機要先預冷後再用。

實在不行試試冰浴水洗法吧,操作簡單而且電擊轉化效率很高的。

感受態細胞的轉化要注意些什麼

10樓:匿名使用者

注意事項:

1.實驗中所需氯化鈣於冰浴後再使用

2.使用離心機前,要嚴格保證離心物品充分平衡,以免造成離心機損傷3.大腸桿菌感受態一定放冰上溶化

4.熱激和冰浴時間要科學把握

11樓:匿名使用者

此外(1)質粒dna的質量和濃度,環狀重組質粒的轉化率較分子量相同的線性重組質粒高10~100倍,則會使轉化率下降;ml左右,且注意防止被其它試劑。(應注意od600值與細胞數之間的關係隨菌株的不同而不同),大於30kb的重組質粒將很難進行轉化:所用的cacl2等試劑均需是最高純度的。

對tg1菌株。所有的試劑都要滅菌。對於以質粒為載體的重組分子而言:

用於轉化的質粒dna應主要是超螺旋態的,並經高壓滅菌處理,1ng的cccdna即可使50ul的感受態細胞達到飽和。一般地。細胞生長密度以每毫公升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳,所用器皿,並用最純淨的水配製,細胞密度在5×107個/:

整個操作過程均應在無菌條件下進行,分子量大的轉化效率低,移液槍頭等最好是新的,不能離開冰浴,重組dna分子的構型與轉化效率也密切相關,否則細胞轉化率將會降低,可通過測定培養液的od600控制、dna酶或雜dna所汙染,轉化率與外源dna的濃度在一定範圍內成正比。密度過高或不足均會使轉化率下降。不要用已經過多次轉接。

(二)感受態細胞轉化中的影響。(2)感受態細胞的質量。整個操作均需在冰上進行,但當加入的外源dna的量過多或體積過大時,dna溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5%,實驗證明,及貯存在4℃的培養菌液,因此重組dna大都構成環狀雙螺旋分子,最好分裝儲存於4℃ (3)細胞的生長狀態和密度 最好從-70℃或-20℃甘油儲存的菌種中直接轉接用於製備感受態細胞的菌液。

即應用對數期或對數生長前期的細菌,否則均會影響轉化效率或雜dna的轉入,od600為0.5時,如離心管

酵母感受態細胞的製備需要注意什麼

12樓:匿名使用者

酵母感受態細胞的製備

(1)從ypd平板上挑取乙個新鮮的釀酒酵母eby100單轉殖至10 mlypd液體培養基,30℃,250 rpm培養過夜;

(2)測定過夜培養物的od600值為3.0~5.0之間;

(3)將10 ml ypd過夜培養物稀釋至od600值為0.2~0.4;

(4)在28~30℃搖床中繼續培養3~6hr,使其od600值達到0.6~1.0;

(5)於室溫1500g離心5 min收集酵母細胞,棄上清;

用10ml洗液洗酵母細胞,隨後於室溫1500g離心5 min離心收集細胞,棄上清;

(7)用1 ml te/liac重懸酵母細胞,以每管50μl分裝。

酵母細胞的轉化

(1)取50μl感受態細胞,再加入待轉質粒各2μl,混勻;

(2)加入500μl 轉化用溶液(peg/liac,二甲亞碸),彈擊管壁混勻;

(3)30℃水浴1hr,隔15min彈擊管壁混勻;

(4)加入1毫公升ypd培養液,30℃搖床培養1小時

(5)3500g離心5 min ,留沉澱,棄上清;

沉澱用150μl te重懸,塗相應的sd平板;將平板倒置於30℃培養。

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