1樓:匿名使用者
首先查文獻,看有沒有相關人做過相應的蛋白,其次去幾個大的國際化試劑公內司**容查有沒有商業化的抗體。。如果都沒有,就只能自己做了。。一抗一半是來自老鼠,那麼二抗就可以選擇針對鼠源的抗體,並且二抗看你需要什麼顯色方式,hrp或者是ap的。。。
2樓:anyuan在路上
1、首先看你做的動物是人、大鼠、小鼠、還是兔等等?確定好這個之後,在購買一回抗的時候,就要選擇抗以上
答這些種屬的抗體。
說簡單一點,比如:你的實驗動物是大鼠。那麼一抗就應該是某某抗大鼠,某某就是你一抗的種屬**(host species),假如你的一抗是兔**的,也就是兔抗大鼠,二抗就應該是某某抗兔,一般常見的是山羊抗兔的二抗。
明白了麼?
抗體在乙個實驗過起著關鍵的作用,一抗二抗一定要選對,要不然其他的操作都是徒勞。
westernblot的一抗和二抗都可以用多轉殖抗體嗎
3樓:匿名使用者
western blot的一抗和二抗都
來可以用多轉殖
源抗體不過多轉殖抗體因為有bai
多個結合位點du,事實上的zhi特異性並不如單dao轉殖抗體,所以一般western blot都盡量要求使用單轉殖抗體。以保證實驗結果準確可靠
western一抗和二抗的稀釋倍數一般是多少?
4樓:匿名使用者
一般抗體bai的說明上,都du給出了乙個範圍,zhi
一抗為1:200-2000,二抗為1:1000-10000。
western blot 的原dao理:本質是抗原抗體回反應。第一抗體就是能和非答抗體性抗原(特異性抗原)特異性結合的蛋白。
種類包括單轉殖抗體和多轉殖抗體。第二抗體是能和抗體結合,即抗體的抗體,其主要作用是檢測抗體的存在,放大一抗的訊號。
5樓:匿名使用者
一般根據抗體的特異性和親和度。一抗的濃度範圍比較大,從1:200到1:
1000都有,這個要多做幾次才能確定。二抗的稀釋倍數打,一般用1:5000到1:
10000就可以了。
6樓:賽智創業
一般抗體的說明上,都給出了乙個範圍,可以以這個範圍為根據摸索。一般一抗為1:200-2000,二抗為1:1000-10000.
希望我的回答對您有幫助。
請教一下各位western blot孵完一抗忘了清洗就直接孵二抗會有什麼後果?謝謝啦
7樓:匿名使用者
相當於延長了孵育一抗的時間,一部分二抗被多餘的一抗結合浪費,版由於未清洗一抗權並未結合在膜上在二抗孵育清洗時也會洗掉,但是很可能會使你應該與二抗結合的一抗接觸不到二抗或不均勻,造成條帶不清異常,還有較強的非特異背景
western blot的一抗、二抗可以重複用麼?一般可以用幾次?
8樓:
儲存得當的話,一抗工作液可重複利用2-3次一般不影響效果,但也不絕對,主要是看你的抗體本身如何,如果第一次做出來效果就不理想就不提倡這麼做了。二抗還是算了吧!那麼便宜,扔了不可惜。
如何選擇一抗和二抗
二抗廣義上是指專門和一抗進行特異性反應和結合的抗體,在免疫學反應中,經常需要針對試驗選擇不同的二抗,艾美捷能為您的科研工作提供最適合和最全面的二抗產品。檢測任何目的靶蛋白都有不止一種抗體可供選擇,同時在後繼試驗中也會有不同的檢測方案,因此在選擇二抗的時候要綜合考慮一抗的型別及後繼檢測方案的要求 雖然...
哪些實驗必須用western blot做
原理與southern或northern雜交方法類似,但western blot採用的是聚丙烯醯胺凝膠電泳,被檢測物是蛋白質,探針 是抗體,顯色 用標記的二抗。經過page分離的蛋白質樣品,轉移到固相載體 例如硝酸纖維素薄膜 上,固相載體以非共價鍵形式吸附蛋白質,且能保持電泳分離的多肽型別及其生物學...
免疫螢光染色的一抗,二抗分別用什麼稀釋
pbs稀釋。當然最好用封閉液直接稀釋,再加一點tritonx100效果好。培養液成分太多了。而且固定之後細胞都死了,用培養液沒什麼意義,只要保證其ph等條件適合就好了。抗體說明書上都會有推薦的稀釋倍數。上網查一下,有很多protocol。一般一比幾百到一萬都有,依抗體而定。可以4度過夜,這樣染色效果...